Рассохина И.И. Использование микроорганизмов как средство повышения продуктивности и устойчивости сельскохозяйственных культур // АгроЗооТехника. 2021. Т. 4. № 3. DOI: 10.15838/alt.2021.4.3.2 URL: http://azt-journal.ru/article/29088
Буряков Н.П. Кормление стельных сухостойных и дойных коров // Молочная промышленность. 2008. № 4. С. 37–40.
Никитин С.Н., Захаров С.А. Влияние микробиологических, биопрепаратов и последействия навоза на биологические свойства почвы и урожайность яровой пшеницы // Вестн. Ульян. гос. с.-х. акад. 2016. С. 37–42.
Montesinos E., Bonaterra A., Badosa E., Frances J., Alemany J., Llorente I., Moragrega C. Plant-microbe interactions and the new biotechnological methods of plant disease control. International Microbiology, 2002, no. 5, pp. 169–175. Available at: https://doi.org/10.1007/s10123-002-0085-9
Петров В.Б., Чеботарь В.К. Микробиологические препараты – базовый элемент современных интенсивных агротехнологий растениеводства // Достижения науки и техники АПК. 2011. № 8. С. 11–15.
Коломиец Э. Вклад микробиологической науки в развитие агротехнологий // Наука и инновации. 2016. № 6 (160). С. 23–25.
Рябова О.В. К вопросу разработки микробиологических препаратов (фунгицидов и удобрений) для условий Северо-Востока европейской части Российской Федерации // Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2016. № 1 (50). С. 31–40.
Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации / Мин-во сельск. хоз-ва Российской Федерации. 2020. Т. 1.
Захаренко В.А. Биотехнологии и защита растений // Защита и карантин растений. 2015. № 11. С. 3–6.
Исследование эффективности штаммов ассоциативных ризобактерий в посевах различных видов растений / Г.А. Воробейков [и др.] // Изв. Рос. гос. пед. ун-та им. А.И. Герцена. 2011. С. 114–123.
Бирюков Е.В. Возможность применения биопрепарата триходермин в качестве микробиологического удобрения в условиях Тамбовской области // Вопросы современной науки и практики. 2008. № 1 (11). Т. 1. С. 84–92.
Moya P., Barrera V., Cipollone J., Bedoya C., Kohan L., Toledo A., Sisterna M. New isolates of Trichoderma spp. as biocontrol and plant growth–promoting agents in the pathosystem Pyrenophora teres-barley in Argentina. Biological Control, 2020, no. 141, pp. 104–152. Available at: https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2019.104152
Sabaté D.C., Petroselli G., Erra-Balsells R., Audisio M.C., Pérez Brandan C. Beneficial effect of Bacillus sp. P12 on soil biological activities and pathogen control in common bean. Biological Control, 2020, no. 141, pp. 1–8. Available at: https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2019.104131
Эндофитные микроорганизмы в фундаментальных исследованиях и сельском хозяйстве / Е.Н. Васильева [и др.] // Экологическая генетика. 2019. № 17 (1). С. 19–32. URL: https://doi.org/10.17816/ecogen17119-32
Бактерии рода Bacillus в регуляции устойчивости пшеницы к обыкновенной злаковой бактерии Schizaphis graminum Rond. / С.В. Веселова [и др.] // Прикладная биохимия и микробиология. 2019. № 1 (55). С. 56–63. URL: https://doi.org/10.1134/S0555109919010185
Перспективы применения бактерий – продуктов липопептидов для защиты растений (обзор) / И.В. Максимов [и др.] // Прикладная биохимия и микробиология. 2020. № 56 (1). С. 19–34. URL: https://doi.org/10.31857/S0555109920010134
Использование биопрепаратов – дополнительный источник элементов питания растений / И.А. Тихонович [и др.] // Плодородие. 2011. № 3 (60). С. 9–13.
Влияние комплексного применения удобрений и биопрепаратов на эффективное плодородие чернозема выщелоченного и продуктивность ячменя / Н.Н. Шулико [и др.] // Агрохимия. 2019. № 2. С. 13–20. URL: https://doi.org/10.1134/S0002188119020133
Микробные препараты на основе эндофитных и ризобактерий, которые перспективны для повышения продуктивности и эффективности использования минеральных удобрений у ярового ячменя (Hordeum vulgare L.) и овощных культур / В.К. Чеботарь [и др.] // Сельскохозяйственная биология. 2016. Т. 51. № 3. С. 335–342.
Сытников Д.М. Биотехнология микроорганизмов-азотфиксаторов и перспективы применения препаратов на их основе // Бiотехнологiя. 2012. Т. 5. № 4. С. 34–45.
Фатина П.Н. Применение микробиологических удобрений в сельском хозяйстве // Вестн. Астрахан. гос. техн ун-та. 2007. № 4 (39). С. 133–137.
Кириченко Е.В., Коць С.Я. Использование Аzotobacter chroococcum для создания комплексных биологических препаратов // Бiотехнологiя. 2011. Т. 4. № 3. С. 74–81.
Кожемяков А.П., Тимофеева С.В. Биопрепараты комплексного действия защищают растения от болезней // Аграрный эксперт. 2007. № 2. С. 26–29.
Котова З.П., Дроздов С.Н. Влияние биопрепаратов на продуктивность картофеля в Карелии // Аграрная наука. 2006. № 7. С. 13–14.
Качество и урожайность культур звена севооборота при применении удобрений и микробиологических препаратов в Вологодской области / О.В. Чухина [и др.] // Плодородие. 2015. № 1. С. 25–29.
Биологизация минеральных удобрений как способ повышения эффективности их использования / А.А. Завалин [и др.] // Достижение науки и техники АПК. 2012. № 9. С. 45–47.
Avdeenko A., Avdeenko S., Domatskiy V., Platonov, A. Bacillus subtilis based products as an alternative to agrochemicals. Research on Crops, 2020, no. 21 (1), pp. 156–159. Available at: http://dx.doi.org/10.31830/2348-7542.2020.026
Falardeau J., Wise C., Novitsky L., Avis T.J. Ecological and mechanistic insights into the direct and indirect antimicrobial properties of Bacillus subtilis Lipopeptides on Plant Pathogens. Journal of Chemical Ecology, 2013, no. 39, pp. 869–878. Available at: https://doi.org/10.1007/s10886-013-0319-7
Porcel R., Zamarreño Á.M., García-Mina J.M., Aroca R. Involvement of plant endogenous ABA in Bacillus megaterium PGPR activity in tomato plants. BMC Plant Biology, 2014, no. 14 (36), pp. 1–12. Available at: https://doi.org/10.1186/1471-2229-14-36
Пробиотические препараты на основе микроорганизмов рода Bacillus / О.В. Федорова [и др.] // Вестн. технол. ун-та. 2016. № 15. Т. 19. С. 170–174.
Титова В.И., Дабахова Е.В., Сметов Д.Б. Изучение микробиологических и ростстимулирующих препаратов на кормовых культурах // Агрохим. вестн. 2011. № 2. С. 31–33.
Продуктивность кормовых трав при использовании микробиологических препаратов в условиях Вологодской области / А.В. Платонов [и др.] // Кормопроизводство. 2021. № 1. С. 21–25. URL: https://doi.org/10.25685/KRM.2021.1.2021.001
Rassokhina I.I., Platonov A.V., Laptev G.Y., Bolshakov V.N. Morphophysical reaction of Hordeum vulgare to the influence of microbial preparations. Regulatory Mechanisms in Biosystems, 2020, no. 11 (2), pp. 220–225. Available at: https://doi.org10.15421/022032
Castro R.O., Cantero E.V., Bucio J.L. Plant growth promotion by Bacillus megaterium involves cytokinin signaling. Plant Signaling and Behavior, 2008, no. 3 (4), pp. 263–265. Available at: https://doi.org/10.4161/psb.3.4.5204
López-Bucio J., Campos-Cuevas J.C., Hernández-Calderón E., Velásquez-Becerra C., Farías-Rodríguez R., Macías-Rodríguez L.I., Valencia-Cantero E. Bacillus megaterium rhizobacteria promote growth and alter root-system architecture through an auxin-and ethylene-independent signaling mechanism in Arabidopsis thaliana. Molecular Plant-Microbe Interactions, 2007, no. 20 (2), pp. 207–217. Available at: https://doi.org/10.1094/MPMI -20-2-0207
Zou C., Li Z., Yu D. Bacillus megaterium strain XTBG34 promotes plant growth by producing 2-pentylfuran. The Journal of Microbiology, 2010, no. 48, pp. 460–466. Available at: https://doi.org/10.1007/s12275-010-0068-z
Блинков Е.А., Цавкелова Е.А., Селицкая О.В. Образование ауксина штаммом Klebsiella planticola ТСХА-91 и его влияние на развитие семян огурца посевного (Cucumis sativus L.) // Микробиология. 2014. № 5. Т. 83. С. 543–551.
Tsavkelova E.A., Klimova S.Y., Cherdyntseva T.A., Netrusov A.I. Microbial producers of plant growth stimulators and their practical use: A review. Applied Biochemistry and Microbiology, 2006, no. 42 (2), pp. 117–126. Available at: https://doi.org/10.1134/S0003683806020013
Pérez-Montaño F., Alías-Villegas C., Bellogín R.A., Del Cerro P., Espuny M.R., Jiménez-Guerrero I., López-Baena F.J., Ollero F.J., Cubo T. Plant growth promotion in cereal and leguminous agricultural important plants: from microorganism capacities to crop production. Microbiological Research, 2014, no. 169 (5-6), pp. 325–336. Available at: https://doi.org/10.1016/j.micres.2013.09.011
Chernyad’ev I.I. The protective action of cytokinins on the photosynthetic machinery and productivity of plants under stress. Applied Biochemistry and Microbiology, 2009, no. 45 (4), pp. 351–362. Available at: https://doi.org/10.1134/S0003683809040012
Особенности гормонального баланса сортов овса посевного в связи с фотосинтезом и продуктивностью / Э. Смирнова [и др.] // Междунар. с.-х. журн. 2013. № 2. С. 61–64.
Бахтенко Е.Ю., Платонов А.В. Влияние 6-бензиламинопурина на устойчивость пшеницы к почвенному затоплению // Агрохимия. 2004. № 7. С. 41–46.
Tsavkelova E.A., Cherdyntseva T.A., Klimova S.Yu. [et al.]. Orchidassociated bacteria produce indole3acetic acid, promote seed germination, and increase their microbial yield in response to exogenous auxin. Archives of Microbiology, 2007, vol. 188, no. 6, pp. 655–664. Available at: https://doi.org/10.1007/s00203-007-0286-x
Wilkinson K.G., Dixon K.W., Sivasithamparam K. Effect of IAA оn symbiotic germination of аn Australian orchid and its production bу orchidassociated bacteria. Plant Soil, 1994, vol. 159, pp. 291–295. Available at: https://doi.org/10.1007/BF00009292
Маракаев О.А., Титова О.В. О возможном участии аминокислот в биосинтезе ауксинов у Dactylorhiza maculata (L.) Soo (Orchidaceae) // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях: тезисы VI Междунар. конф. М., 2000. С. 49.
Образование ауксинов эндофитными бактериями подземных органов Dactylorhiza maculata (L.) Soo (Orchidaceae) / Н.В. Шеховцова [и др.] // Вестн. ОГУ. 2011. № 12 (131). С. 366–368.
Эффективность инокуляции семян овса посевного штаммом Рseudomonas sр. GEOT18, перспективным для создания биопрепарата / И.И. Рассохина [и др.] // Междунар. с.-х. журн. 2020. № 5 (377). С. 52–55. URL: https://doi.org/10.24411/2587-6740-2020-15093
Rojas-Solís D., Zetter-Salmón E., Contreras-Pérez M., del Carmen Rocha-Granados M., Macías-Rodríguez L., Santoyo G. Pseudomonas stutzeri E25 and Stenotrophomonas maltophilia CR71 endophytes produce antifungal volatile organic compounds and exhibit additive plant growth-promoting effects. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 2018, no. 13, pp. 46–52. Available at: https://doi.org/10.1016/j.bcab.2017.11.007
Andreolli M., Zapparoli G., Angelini E., Lucchetta G., Lampis S., Vallini G. Pseudomonas protegens MP12: A plant growth-promoting endophytic bacterium with broad-spectrum antifungal activity against grapevine phytopathogens. Microbiological research, 2019, no. 219, pp. 123–131. Available at: https://doi.org/10.1016/j.micres.2018.11.003
Oteino N., Lally R.D., Kiwanuka S., Lloyd A., Ryan D., Germaine K.J. Dowling D.N. Plant growth promotion induced by phosphate solubilizing endophytic Pseudomonas isolates. Frontiers in Microbiology, 2015, no. 6, pp. 745. Available at: https://doi.org/10.3389/fmicb.2015.00745
Trinh C.S., Lee H., Lee W.J., Lee S.J., Chung N., Han J., Kim J., Hong S.-W., Lee H. Evaluation of the plant growth-promoting activity of Pseudomonas nitroreducens in Arabidopsis thaliana and Lactuca sativa. Plant Cell Reports, 2018, no. 37, pp. 873–885. Available at: https://doi.org/10.1007/s00299-018-2275-8
Ortiz-Castro R., Campos-García J., López-Bucio J. Pseudomonas putida and Pseudomonas fluorescens influence Arabidopsis root system architecture through an auxin response mediated by bioactive cyclodipeptides. Journal of Plant Growth Regulation, 2020, no. 39, pp. 254–265. Available at: https://doi.org/10.1007/s00344-019-09979-w
Minaeva O.M., Akimova E.E. Effectiveness of applying bacteria Pseudomonas sp., strain b-6798, for anti-phytopathogenic protection of crops in Western Siberia. Tomsk State University Journal of Biology, 2013, no. 3 (23), pp. 19–37.
Биологические препараты для защиты и повышения урожая сельскохозяйственных культур / И.Н. Феклистова [и др.] // Биологически активные препараты для растениеводства: мат-лы конф. Минск, 2018. С. 196–198.
Золотарев В.Н. Эффективность применения бактериальных биопрепаратов ассоциативных диазотрофов и азотного удобрения в семенных посевах райграса однолетнего // Агрохимия. 2015. № 7. С. 11–16.
Куницына В.В., Ступина Л.А. Влияние препаратов ассоциативных азотфиксирующих бактерий на формирование продуктивности ярового ячменя в Приобской зоне // От биопродуктов к биоэкономике: мат-лы II межрегион. науч.-практ. конф. (с междунар. участием) / под. ред. А.Н. Лукьянова; Алт. гос. техн. ун-т им. И.И. Ползунова. Барнаул: Изд-во АлтГТУ, 2018. С. 139.
Taylor C.C., Ranjit N.J., Mills J.A., Neylon J.M., Kung Jr.L. The effect of treating whole-plant barley with Lactobacillus buchneri 40788 on silage fermentation, aerobic stability, and nutritive value for dairy cows. Journal of Dairy Science, 2002, no. 85 (7), pp. 1793–1800. Available at: https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(02)74253-7
Limanska N., Ivanytsia T., Basiul O., Krylova K., Biscola V., Chobert J.-M., Ivanytsia V.O., Haertle T. Effect of Lactobacillus plantarum on germination and growth of tomato seedlings. Acta Physiologiae Plantarum, 2013, no. 35 (5), pp. 1587–1595. Available at: https://doi.org/10.1007/s11738-012-1200-y
Kuwaki S., Ohhira I., Takahata M., Hirota A., Murata Y., Tada M. Effects of the fermentation product of herbs by lactic acid bacteria against phytopathogenic filamentous fungi and on the growth of host plants. Journal of Bioscience and Bioengineering, 2004, no. 98 (3), pp. 187–192. Available at: https://doi.org/10.1016/S1389-1723(04)00264-6
Препарат «Биотроф-600» – стимулятор роста томатов / Е.А. Лапицкая [и др.] // Аграрн. вестн. Урала. 2008. № 5. С. 42–44.
Gummalla S., Broadbent J.R. Tryptophan catabolism by Lactobacillus casei and Lactobacillus helveticus cheese flavor adjuncts. Journal of Dairy Science, 1999, no. 82 (10), pp. 2070–2077. Available at: https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(99)75448-2